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Jul 26, 2023

Optimieren Sie die Fruchtbarkeit von Erdbeeren mit Pflanzengewebetests

Von Kristin Hicks, NCDA&CS Agronomic Services Division RALEIGH – Um Wachstum, Fruchtqualität und wirtschaftliche Rendite zu optimieren, erfordert die kommerzielle Erdbeerproduktion eine intensive und präzise Produktion

Von Kristin Hicks, NCDA&CS Agronomic Services Division

RALEIGH – Um Wachstum, Fruchtqualität und wirtschaftliche Rendite zu optimieren, erfordert die kommerzielle Erdbeerproduktion eine intensive und präzise Düngung während der gesamten Saison.

„Landwirte hängen stark von hochwertigen Nutzpflanzen wie Erdbeeren ab, daher ist die Verwendung einer kombinierten Strategie aus Bodentests vor der Saison und Analyse des Pflanzengewebes während der Saison ein kostengünstiger und hochwirksamer Ansatz, um sowohl den Erdbeerertrag als auch die Qualität zu optimieren“, sagte er Kristin Hicks, Abteilungsleiterin der Abteilung für agronomische Dienstleistungen des Ministeriums für Landwirtschaft und Verbraucherdienste des US-Bundesstaats North Carolina. „Durch Tests entfällt das Rätselraten bei der Fehlerbehebung bei der Ernte und ermöglicht es den Landwirten, Anpassungen vorzunehmen, um die Pflanzen gesund und produktiv zu halten.“

Mithilfe von Pflanzengewebetests wird der Nährstoffgehalt in den Blättchen gemessen und mit den festgelegten Zielkonzentrationen für gesunde Erdbeeren verglichen. Diese Analyse kann Nährstoffdefizite und -ungleichgewichte innerhalb der Pflanze aufdecken und es Landwirten ermöglichen, die Fruchtbarkeit als Reaktion auf sich ändernde Pflanzenbedürfnisse anzupassen. Die Analyse des Pflanzengewebes bei Erdbeeren sollte Stickstoff (N), Phosphor (P), Kalium (K), Kalzium (Ca), Magnesium (Mg) und Schwefel (S), Eisen (Fe), Mangan (Mn) und Zink umfassen. Zn), Kupfer (Cu) und Bor (B). In North Carolina sind Stickstoff-, Schwefel-, Magnesium- und Bormangel die häufigsten Nährstoffmängel bei Juni-Erdbeeren.

Stickstoff und Nitrat-Stickstoff.Von den 11 essentiellen Nährstoffen wird Stickstoff in der höchsten Menge benötigt, ist der größte Ertragsfaktor und liegt am häufigsten in unzureichenden Mengen vor.

In North Carolina lagen von den fast 4.000 Gewebeproben von Juni-Erdbeeren, die zwischen 2010 und 2021 bei NCDA&CS zur Analyse eingereicht wurden, 44 % unter der kritischen Konzentration von 3,0 % Stickstoff.

Aufgrund der Bedeutung einer stetigen Stickstoffversorgung im Erdbeeranbau wird auch die Analyse von Nitrat-Stickstoff (NO3-N) in den Blattstielen empfohlen. Die NO3-N-Werte im Blattstiel stellen eine Momentaufnahme des Stickstofftransports vom Boden in die Pflanze dar, sind ein besserer Indikator für den Stickstoffbedarf als im Blattgewebe und sollten als Grundlage für wöchentliche Stickstoffmengenbestimmungen dienen. Die optimale Menge an Blattstiel-NO3-N ändert sich im Laufe der 12-wöchigen Saison; Die Zielkonzentration ist bei der ersten Blüte niedrig, da die Pflanzen aus der Winterruhe erwachen, erreicht aber in den Wochen zwei bis vier schnell den maximalen Bedarf. Wenn eine starke Fruchtbildung beginnt, beginnt der NO3-N-Zielwert zu sinken, um schädliche Auswirkungen von überschüssigem Stickstoff auf die Fruchtqualität zu verhindern.

Schwefel und Stickstoff: Schwefelverhältnis. Darüber hinaus kann ein erhöhter Stickstoffgehalt zu einem Ungleichgewicht mit Schwefel im Pflanzenstoffwechsel führen. Die Überwachung des Stickstoff-Schwefel-Verhältnisses (N:S) ist ein wesentlicher Bestandteil des Fruchtbarkeitsmanagements in Erdbeerkulturen. Wenn N:S größer als 18:1 ist, kann dies zu einer schlechten Verwertung von Stickstoff und Schwefel oder von beiden führen, selbst wenn der Gewebegehalt dieser Nährstoffe ausreichend ist. In North Carolina wiesen 33 % der Erdbeerproben N:S-Verhältnisse von mehr als 18:1 auf und 11 % lagen unter der kritischen Konzentration von 0,15 % Schwefel. Ein zu hoher N:S-Wert oder ein zu niedriger Schwefelgehalt können leicht mit einer Injektion von 1–2 Pfund korrigiert werden. Schwefel pro Hektar. Übliche Düngemittel sind Bittersalz (Magnesiumsulfat) (13 % Schwefel) und Kaliumsulfat (18 % Schwefel).

Magnesium. Im gleichen Probenzeitraum lagen 7 % der Erdbeergewebeproben unter der kritischen Konzentration von 0,25 % Magnesium. Ein Mangel an Magnesium führt zu einer Gelbfärbung zwischen den Adern der älteren, reifen Blätter, die sich dann bis zu den Blatträndern ausbreitet. Bittersalz, MgSO4 (10 % Magnesium), ist häufig der Dünger der Wahl, da es auch Schwefel liefert und das N:S-Verhältnis mildert. Injektionen von 7–10 Pfund. Die Menge an Bittersalz pro Hektar und Woche reicht im Allgemeinen aus, um während der gesamten Produktionssaison ausreichend Magnesium und Schwefel zu liefern.

Bor. Bormangel ist für qualitativ hochwertiges Obst unerlässlich und verursacht viele Symptome. Zu den offensichtlichsten gehören jedoch deformierte Beeren, asymmetrische Blätter und stumpfe Wurzeln. In North Carolina lagen 8 % der Erdbeerproben unter der kritischen Konzentration von 22 ppm Bor. Wenn vor der Pflanzung kein Bor ausgebracht wurde, ist eine einmalige Anwendung von 0,125 Pfund erforderlich. Bor pro Hektar bei der ersten oder zweiten Fertigation ist ratsam. Jede zusätzliche Boranwendung sollte ausschließlich auf der Gewebeanalyse basieren. Zu den gängigen Bordüngern gehören Borax (11 % Bor) und Solubor (20,5 % Bor). Bei der Steuerung der Borfruchtbarkeit ist die Vermeidung von Bortoxizität von gleicher oder größerer Bedeutung als die Vorbeugung von Bormangel. Tatsächlich hat sich gezeigt, dass Bor bei übermäßiger Anwendung viel eher zu Ernteausfällen führt als bei zu geringer Anwendung. Bei Erdbeerkulturen äußert sich die Bortoxizität durch ein Verbrennen der Blattränder und ist zu diesem Zeitpunkt nur schwer zu mildern. Züchter sollten sehr darauf achten, nur die empfohlene Menge Bor zu verwenden, da der Grat zwischen ausreichender Borversorgung und Bortoxizität sehr schmal ist.

So entnehmen Sie eine Gewebeprobe. Zur routinemäßigen Überwachung während der Saison sollte die Analyse des Pflanzengewebes beginnen, wenn das Frühlingswachstum beginnt, und alle 1–2 Wochen während der gesamten Blüte- und Fruchtphase fortgesetzt werden. Die Analyse von Pflanzengewebe ist auch nützlich, wenn Pflanzen Anzeichen von schlechtem Wachstum oder schlechtem Gesundheitszustand zeigen; Diese Diagnoseproben können in jedem Wachstumsstadium entnommen werden und sollten zum Vergleich sowohl Proben von ungesunden als auch von gesunden Pflanzen umfassen. Die Nährstoffkonzentrationen innerhalb der Pflanze variieren je nach Wachstumsstadium und Pflanzenteil. Unsachgemäß entnommene Gewebeproben können zu unzuverlässigen Ergebnissen führen und zu falschen Interpretationen führen.

Um eine Gewebeprobe von einer Erdbeerpflanze zu entnehmen, wählen Sie die zuletzt reifen dreiblättrigen Blätter (MRMLs) aus. Diese Blätter sind ausgewachsen und grün und bestehen aus einem Blattstiel (Blattstiel) mit drei Blättchen (Abb. 1). MRMLs befinden sich normalerweise drei bis fünf Blätter hinter dem Wachstumspunkt und schlüpfen weder neu aus der Krone noch liegen sie auf dem Kunststoff. Beim Sammeln von MRMLs ist es sehr wichtig, den Blattstiel sofort von den Blättchen zu lösen. Dadurch wird der Nährstofftransfer zwischen den beiden Pflanzenteilen gestoppt und die getrennte Analyse der beiden Pflanzenteile ermöglicht.

Jede Probe sollte Blätter und Blattstiele von 20 bis 25 Stellen innerhalb einer einheitlichen Fläche umfassen. Beispielsweise sollte das Pflanzenmaterial in einer einzigen Probe von derselben Sorte sein, auf demselben Bodentyp wachsen, sich in derselben Wachstumsphase befinden und dieselbe Bewirtschaftungsgeschichte aufweisen. Achten Sie bei der Einsendung von Gewebeproben darauf, dass Sie die Befruchtungshistorie und die Umgebungsbedingungen angeben. Um die korrekte Interpretation zu erhalten, ist es besonders wichtig, das Wachstumsstadium (Blüte oder Frucht) und die Anzahl der Wochen seit der ersten Blüte genau anzugeben.

Eine bebilderte Anleitung zum Sammeln und Einreichen von Erdbeergewebeproben ist online unter http://www.ncagr.gov/agronomi/Tissue/sb01.htm verfügbar.

* Campbell CR, Miner GS. 2000. Erdbeere, jährliche Hügelkultur. In: Campbell CR, Herausgeber.

Referenz-Suffizienzbereiche für die Pflanzenanalyse in der südlichen Region der Vereinigten Staaten. Raleigh (NC): NC-Abteilung für Landwirtschaft und Verbraucherdienste. Southern Cooperative Series Bulletin 394: www.ncagr.gov/agronomi/saaesd/scsb394.pdf